Química

Azul de lactofenol: características, composición, preparación, usos


El azul de lactofenol o azul de algodón es un preparado con propiedades de colorante simple. Es utilizado en laboratorios clínicos para colorear principalmente estructuras fúngicas como, hifas, tubos germinativos y esporas.

Ayuda en el diagnóstico presuntivo o preliminar de ciertos hongos, sin embargo, siempre es aconsejable reforzar el diagnóstico con pruebas más específicas, tales como pruebas bioquímicas o serológicas.

El azul de lactofenol se compone de ácido láctico, azul de anilina, glicerina, fenol y agua desionizada. Se puede preparar en el laboratorio o puede comprarse listo para su uso. Una vez preparado está listo para ser usado, bajo ningún concepto debe diluirse, pues esta acción dará pésimos resultados.

La concentración de sus componentes hacen que sea ideal para teñir a las estructuras fúngicas, debido a que el fenol elimina a la microbiota bacteriana acompañante, mientras que el ácido láctico genera una película protectora alrededor de la estructura fúngica. Finalmente, el azul de anilina tiene afinidad para adherirse a las estructuras del hongo.

Índice del artículo

Fundamento

Con el azul de lactofenol se realiza una coloración simple de las estructuras fúngicas de un determinado cultivo micológico. Se llama simple porque utiliza un solo colorante.

El azul de lactofenol aparte de teñir, también actúa como clarificante de la muestra, gracias a la acción conjunta del ácido láctico y el fenol, además el fenol se comporta como un mordiente y a la vez evita la lisis del microorganismo al inhibir las enzimas hidrolíticas que puedan estar presentes.

Mientras que el ácido láctico preserva la morfología de las estructuras del hongo.

Por otra parte, el azul de anilina tiene la propiedad de adherirse o fijarse a las estructuras que contienen quitina. Las estructuras se tiñen de color azul claro.

Cabe destacar que la pared celular de los microorganismos fúngicos, especialmente los mohos, contienen quitina, siendo por ello que este colorante es ideal para teñir a estos microorganismos.

Características

La solución de azul de lactofenol es un colorante acuoso, fuertemente ácido, de aspecto ligeramente turbio, color azul claro. Se mantiene estable si es resguardada entre 15 °C y 25 °C. El frasco debe mantenerse correctamente cerrado. Es irritante y corrosivo para piel y mucosas.

Composición

La fórmula para preparar un litro de azul de lactofenol es la siguiente:

-250 g/L de ácido láctico

-1.0 g/L de azul de anilina o azul de metilo

-500 g/L de glicerina

-250 g/L de fenol

-250 ml de agua desionizada o destilada.

Se disuelve el fenol en el agua previamente entibiada. Se adiciona el ácido láctico y la glicerina, y se mezcla muy bien. Por último, se disuelve el azul de anilina. Se mezcla nuevamente y está listo para su uso.

Las porciones para preparar 80 ml de solución de azul de lactofenol son:

-20 g cristales de fenol

-20 ml de ácido láctico

-40 ml de glicerina o glicerol

-20 ml agua destilada.

Uso

Se utiliza para teñir estructuras fúngicas y, a través de las características morfológicas observadas a nivel microscópico, poder realizar un diagnóstico presuntivo del hongo.

Procedimiento

Coloración de estructuras fúngicas de cultivos

– Se toma un cultivo puro del hongo al cual se le quieren observar sus estructuras.

– Se trabaja preferiblemente en una campana de flujo laminar, o bajo el mechero, utilizando tapaboca y guantes, ya que es necesario cumplir con normas de bioseguridad, porque la mayoría de los mohos son fáciles para diseminarse en el ambiente y por tanto representan un peligro para el operador.

– En un portaobjeto se coloca una gota de azul de lactofenol.

– Se corta un cuadrito de cinta adhesiva de buena calidad y con mucho cuidado se adhiere en el extremo del asa de platino ya esterilizada y fría.

– Se acerca el asa de platino a la parte más superficial de la colonia fúngica y con mucho cuidado se toca el cultivo, exactamente donde se encuentra la pega de la cinta adhesiva.

– Luego se lleva al portaobjeto y se coloca justo sobre la gota de azul de lactofenol, cuidando que la cinta quede perfectamente extendida y lubricada con el colorante. Con mucha delicadeza se retira el asa de platino.

– Se coloca otra gota de azul de lactofenol sobre la cinta y encima un cubreobjeto. No se debe ejercer demasiada presión para no destruir las estructuras del hongo, ya que estas son extremadamente frágiles. Se debe dejar actuar el colorante por 3 a 4 minutos aproximadamente.

– Luego de este tiempo, ya la preparación está lista para ser observada al microscopio en aumento de 10X o 40X. Si se requiere la observación a 100X se debe utilizar aceite de inmersión.

– Las estructuras del hongo, por lo general, se observan teñidas de color azul, a excepción de los hongos dematiáceos que conservarán su coloración café característica de este tipo de hongos.

Tinción de muestras biológicas directas

Si se requiere estudiar una muestra biológica directa, como esputos, pus, exudados, secreciones, entre otras, estas necesitan tener un procedimiento previo de descontaminación de la muestra. Se utiliza para ello solución de NaOH.

En caso de muestras de cabello estas se pueden teñir de forma directa.

Se toman varios cabellos afectados (10 en total) de la/s lesiones presuntivas de tiña capitis (zonas alopécicas) y se colocan sobre un portaobjetos (3 a 4 cabellos por portaobjetos). Encima se coloca unas gotas de azul de lactofenol e inmediatamente se cubre con un cubreobjeto.

Tome el portaobjeto con una pinza y caliente suavemente sobre un mechero. Para ello haga 3 a 4 pases rápidos por la llama. Observe al microscopio en 40X y busque esporas fuera o dentro del cabello (ectothrix o endothrix respectivamente). Si es necesario coloque aceite de inmersión y observe en 100X.

Coloración del tubo germinativo en la identificación de Candida albicans

Después de incubar el cultivo presuntivo de Candida albicans en suero humano durante 2 a 4 horas a 37 °C, se toma una porción de la solución y se tiñe con azul de lactofenol. La preparación se observa al microscopio a 40X. El tubo germinativo si está presente y las blastosporas se tiñe de azul brillante.

Ficha de seguridad del lactofenol

La Asociación Nacional de Protección contra el Fuego (NFPA), establece la ficha de seguridad de las sustancias químicas en cuanto al riesgo que esta representa según varios aspectos, estos los simboliza a través de un rombo de colores y un número que va desde 0-4.

El riesgo a la salud se identifica en color azul, la inflamabilidad en color rojo, la inestabilidad o reactividad en color amarillo y algún peligro especial en blanco.

Salud

El riesgo para la salud que presenta el azul de lactofenol según la NFPA es de nivel 3. Esto significa que la sustancia es extremadamente peligrosa cuando es ingerido o se encuentra en contacto directo con piel o mucosas.

Es una sustancia altamente corrosiva e irritante.

Al contacto con piel y mucosas causa quemaduras graves.

Si es ingerida puede causar dolor de cabeza, confusión, letargo, inconsciencia, paro respiratorio e incluso la muerte.

Inflamabilidad

Según la NFPA, el azul de lactofenol se encuentra clasificado en nivel 1 en cuanto a inflamabilidad. Esto quiere decir que hace combustión solo si se calienta por encima de los 94 °C.

Inestabilidad

Catalogado según la NFPA en nivel 0 (cero) en cuanto a reactividad. Esto significa que no tiene riesgo de reactividad, es decir, es una sustancia estable químicamente hablando.

Peligros especiales

No ofrece peligros especiales adicionales.

Referencias

  1. Laboratorio SAR. Azul de Lactofenol. 2010. Disponible en: labsar.com.
  2. Laboratorio química clínica aplicada. Azul de lactofenol. 2015. Disponible en: cromakit.es
  3. Laboratorios Merck. Microscopía Azul de lactofenol en solución. 2017. Disponible en: Users/Equipo/Downloads
  4. Tarjeta de Emergencia. Azul de lactofenol en solución para tinción de hongos. Universidad Pontificia Javeriana, Bogotá Colombia. 2014. Disponible en: javeriana.edu.co
  5. González M, Diamont D, Gutiérrez B. Técnica de tinción de estructuras fúngicas con colorantes vegetales como una alternativa no contaminante. Bioagro, 2011; 23 (1): 65-68. Disponible en: Redalyc.
  6. Laboratory Himedia. Lactophenol Cotton Blue. 2017. Available from: himedialabs.com
  7. Wanger A, Chavez V, Huang R, Wahed A, Actor J, Dasgupta A. Biochemical Tests and Staining Techniques for Microbial Identification. Sciencie Direct, 2017; 61-73. Available from: Elsevier